李壮林博士——荣昌生物副总裁、总工程师
Q：ADC偶联环节以及后续纯化步骤倾向于使用一次性的设备还是不锈钢设备，选择的时候主要考量哪些因素？
Q：小分子（如VCMMAE）灭活的方法？
A：灭活的工艺可能有很多种，需要自己去开发。
Q：ADC的中试放大（公斤级别）偶联和纯化是在化学实验室还是在生物实验室进行？偶联需要隔离器吗？
Q：DAR值的检测是用一个方法还是多个方法互相验证？最推荐哪种检测方法？
A：DAR值的确定要结合小分子的特点。检测前期可以通过质谱来定性和分析，后续的日常检测可以利用疏水HPLC来测定DAR值。因为偶联不同的小分子，不同的小分子疏水性不一样，因此出峰时间不同，根据积峰面积的积分比例来计算DAR值。
Q：如何检测抗体和小分子偶联有效性？如何去除裸抗及未偶联小分子？
A：有效性可以用HPLC测定DAR值确定。在做疏水HPLC分析时，未偶联抗体会先出峰，随着偶联小分子的增加，出峰时间会越来越晚，从而可以鉴定出未偶联的比例；因为小分子分子量和抗体及ADC差异比较大，小分子用超滤透析去除。裸抗的去除可以用柱层析，具体的层析柱可以根据产品特点来选择。
A：主要看偶联方式，偶联体系中的pH、温度影响比较大，缓冲体系中有机溶剂的浓度比较重要，会影响小分子及偶联的溶解性；盐的浓度可能会对溶解性有影响，如果盐浓度过高，小分子和ADC的溶解性可能会差一些；对偶联反应的影响不大。
张智涛博士——ACROBiosystems高级产品开发经理
Q：DAR值检测方法？如何保证每批药物的DAR值一致？
A：DAR值采用质谱和HPLC检测，目前也有用payload抗体进行检测的，尝试做一些定量分析；DAR值是均值，一般认为只要在一个范围内即可，以此来判断均一性和稳定性。
Q：ADC药物抗体部分早期开发免疫筛选阶段的关键点有哪些？
A：这也是我们比较关注的一个点。在早期免疫阶段首先会关注免疫抗原天然构象，天然构象决定了免疫拿到的抗体是不是能够跟抗原进行有效的识别；其次包括抗原抗体亲和力和特异性选择；还要关注拿到抗体后的半衰期的情况，ADCC效应及与FcR的结合等。这其实跟我们常规抗体药物的开发关注点类似。
A：杂交瘤的早期筛选是亲和力评估为主，确定合适的候选抗体后就需要安排细胞内化评估。
A：常规不会变化，但是如果修饰了paylaod 之后会有变化的可能，这就是为什么裸抗也需要测内化。候选分子的确内化好，亲水好是策略，但是linker和payload的疏水性会对整个药物的稳定性，有影响，也需要综合考虑。
A：以ADC药物为例，ADC药物进入癌细胞后发生降解，降解后重新形成药物小分子。细胞利用细胞泵这样的系统刺激外原物质外排，小分子（payload）外排后会通过小分子通道进入到周边的细胞，对周边细胞产生杀伤作用，进而对周边细胞进行扩散杀伤，这个就是所谓的旁观者效应。主要是在实体瘤中比较关注。
应用场景：
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免疫、抗体筛选
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SPR、细胞活性检测
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免疫原性检测
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血药浓度分析
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验证数据
>SEC-MALS验证高纯度（>90%）
The purity of Human Her2, Mouse IgG2a Fc Tag(Cat. No. HE2-H5255) was more than 90% and the molecular weight of this protein is around 225-245 kDa verified by SEC-MALS
Anti-LIV-1 mAb immobilized on CM5 can bind Human LIV-1, Fc Tag (Cat. No. LV1-H5254) with an affinity constant of 1.74 nM as determined in a SPR assay (Biacore T200) (Routinely tested).
Loaded Anti-Human ROR1 MAb (Mouse IgG1) on AMC Biosensor, can bind Human / Cynomolgus / Rhesus macaque ROR1, His Tag (Cat. No. RO1-H522y) with an affinity constant of 10.2 nM as determined in BLI assay (ForteBio Octet Red96e) (Routinely tested).
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