数显脑定位仪,大鼠定位仪,小鼠定位仪
产品名称: 数显脑定位仪,大鼠定位仪,小鼠定位仪
英文名称: 数显脑定位仪 / 大鼠定位仪 小鼠定位仪
产品编号: 数显脑定位仪 / 大鼠定位仪 小鼠
产品价格: 0
产品产地: CHINA
品牌商标: 玉研科学仪器有限公司
更新时间: 2023-08-17T15:24:17
使用范围: null
- 联系人 : 方经理
- 地址 : 上海市闵行区兴梅路485号中环科技园301室
- 邮编 : 200237
- 所在区域 : 上海
- 电话 : 185****9044 点击查看
- 传真 : 点击查看
- 邮箱 : sales@yuyanbio.com
大鼠脑立体定位仪、小鼠脑立体定位仪(双臂脑立体定位仪,单臂脑立体定位仪,数显型脑立体定位仪)(根据需求不同,有多种不同的型号可供选择:单臂型,双臂型,数显型,数控型,敬请来电咨询)
动物脑立体定位仪产品特点:
操作灵活、简便,标配大鼠适配器;
脑立体定位仪标尺是由激光雕刻,清晰易读:手动款式精确度为0.1mm,数字显示型号精度为0.01mm;
脑立体定位仪操作臂移动范围(上下,左右,前后):三方向移动距离80mm;
垂直方向可90度转动,并随时锁定位置;
扩充能力很强,可增加操作臂,增加注射装置及颅钻等;
可以根据需要增加不同的固定器,用于多种动物;
脑立体定位仪具有以下优势:
- 标尺易读数
- 移动平滑
- 全方位调节
- 电生理操作方便
- 配件多样,可选配各种动物适配器,麻醉罩以及颅钻
大鼠脑立体定位仪的主要构造:
数字显示型脑立体定位仪 Digital Stereotaxic Instrument 是一种可靠的多功能的设备,通过仪器的精准定位,可以确保点击、微管以及其它设备在实验过程中的精确定位。
数显型脑立体定位仪主要特点:
1.适用于小鼠、新生大鼠、鸟类等动物的研究(请根据需求选择合适的配置);
2.无U型底座设计,操作空间最大化;
3.读数精度采用游标卡尺方式,读数精度为10μm;
4.操作臂上下、前后、左右移动范围可达80mm;垂直方向移动90°可锁住;
5.配有鼻子适配器、三种不同型号的耳棒等;
6.三角形的导轨使之能够进行快速定位。其通用的接点便于实验者横向或纵向移动电极,锁定装置能够将电极以任何角度固定,不会滑脱。
7.扩充能力很强,可增加操作臂、增加注射装置及颅钻等,也可以根据需要增加不同的固定器;
8.目标定位的调零功能:在任意一个位点,每条轴方向上的显示都可以归零,这样就可以使操作简化,阅读方便。实际操作中,如果要定位一个特殊位点,可以先找到参考点,然后归零,再移动数显型脑立体定位仪操作臂到希望到达的点上,调低电极,夹持器或微管到位点上即可。
小鼠及幼大鼠脑立体定位仪适配器
该小鼠适配器耳杆采用树脂材料,对尖端进行适合的锥度处理,能够牢固的夹紧小鼠头部又避免了采用不锈钢作为耳杆对小鼠颅骨的损伤,两侧耳杆的高度和门齿夹的高度均可自由进行调节,并带有刻度,适合不同的角度进行实验。
多种型号可供选择:
标准脑立体定位仪(大鼠)
标准脑立体定位仪(大鼠)(带非穿刺耳杆)
双臂标准脑立体定位仪(大鼠)
双臂标准脑立体定位仪(大鼠)(带非穿刺耳杆)
超精密标准脑立体定位仪(大鼠)
超精密标准脑立体定位仪(大鼠)(带非损伤耳杆)
超精密双臂标准脑立体定位仪(大鼠)(带非损伤耳杆)
数显标准脑立体定位仪(大鼠)
数显标准脑立体定位仪(大鼠)(带非穿刺耳杆)
数显双臂标准脑立体定位仪(大鼠)
数显双臂标准脑立体定位仪(大鼠)(带非穿刺耳杆)
电动标准脑立体定位仪(大鼠)
定位仪基座,大鼠头部固定器
还有精密型手动款脑立体定位仪可选,国产精加工,性价比优,欢迎来电咨询;
51600,标准脑立体定位仪(大鼠)
单臂、数显标准脑立体定位仪(大鼠)
双臂、数显双臂标准脑立体定位仪(大鼠)
脑立体定位仪相关配件及可选配件:
1. Albéri, L., Lintas, A., Kretz, R., Schwaller, B., & Villa, A. E. (2013). The calcium-binding protein parvalbumin modulates the firing 1 properties of the reticular thalamic nucleus bursting neurons. Journal of neurophysiology, 109(11), 2827-2841.
2. Sonati, T., Reimann, R. R., Falsig, J., Baral, P. K., O’Connor, T., Hornemann, S., Aguzzi, A. (2013). The toxicity of antiprion antibodies is mediated by the flexible tail of the prion protein. Nature, 501(7465), 102-106.
3. Ali, I., O’Brien, P., Kumar, G., Zheng, T., Jones, N. C., Pinault, D., O’Brien, T. J. (2013). Enduring Effects of Early Life Stress on Firing Patterns of Hippocampal and Thalamocortical Neurons in Rats: Implications for Limbic Epilepsy. PLOS ONE, 8(6), e66962.
4. Bell, L. A., Bell, K. A., & McQuiston, A. R. (2013). Synaptic Muscarinic Response Types in Hippocampal CA1 Interneurons Depend on Different Levels of Presynaptic Activity and Different Muscarinic Receptor Subtypes. Neuropharmacology.
5. Bolzoni, F., Bączyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology.
6. Bolzoni, F., Bączyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology.
7. Babaei, P., Tehrani, B. S., & Alizadeh, A. (2013). Effect of BDNF and adipose derived stem cells transplantation on cognitive deficit in Alzheimer model of rats. Journal of Behavioral and Brain Science, 3, 156-161.
8. Gilmartin, M. R., Miyawaki, H., Helmstetter, F. J., & Diba, K. (2013). Prefrontal Activity Links Nonoverlapping Events in Memory. The Journal of Neuroscience, 33(26), 10910-10914.
9. Feng, L., Sametsky, E. A., Gusev, A. G., & Uteshev, V. V. (2012). Responsiveness to nicotine of neurons of the caudal nucleus of the solitary tract correlates with the neuronal projection target. Journal of Neurophysiology, 108(7), 1884-1894.
10. Clarner, T., Diederichs, F., Berger, K., Denecke, B., Gan, L., Van der Valk, P., Kipp, M. (2012). Myelin debris regulates inflammatory responses in an experimental demyelination animal model and multiple sclerosis lesions. Glia, 60(10), 1468-1480.
11. Girardet, C., Bonnet, M. S., Jdir, R., Sadoud, M., Thirion, S., Tardivel, C., Troadec, J. D. (2011). Central inflammation and sickness-like behavior induced by the food contaminant deoxynivalenol: A PGE2-independent mechanism.Toxicological Sciences, 124(1), 179-191.
12. Hruška-Plocháň, M., Juhas, S., Juhasova, J., Galik, J., Miyanohara, A., Marsala, M., Motlik, J. (2010). A27 Expression of the human mutant huntingtin in minipig striatum induced formation of EM48+ inclusions in the neuronal nuclei, cytoplasm and processes. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9.
13. Brooks, S., Jones, L., & Dunnett, S. B. (2010). A29 Frontostriatal pathology in the (C57BL/6J) YAC128 mouse uncovered by the operant delayed alternation task. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A10.
14. Yu, L., Metzger, S., Clemens, L. E., Ehrismann, J., Ott, T., Gu, X., Nguyen, H. P. (2010). A28 Accumulation and aggregation of human mutant huntingtin and neuron atrophy in BAC-HD transgenic rat. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9.
15. Baxa, M., Juhas, S., Pavlok, A., Vodicka, P., Juhasova, J., Hruška-Plocháň, M., Motlik, J. (2010). A26 Transgenic miniature pig as an animal model for Huntington’s disease. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A8-A9.
敬请关注玉研仪器微信号:Y55135982
您想了解更多详细资料吗?
请与我们联系:
TEL:021-35183767,18502129044
QQ:3007536624
Mail:yuyan0317@126.com
欢迎您的咨询!