AZ-800-C 封闭式植物荧光成像系统-植物生理/动物生理毒理/实验动物设备-仪器设备-生物在线
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AZ-800-C 封闭式植物荧光成像系统

AZ-800-C 封闭式植物荧光成像系统

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产品名称: AZ-800-C 封闭式植物荧光成像系统

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产品编号: AZ-800-C

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产品产地: 欧洲

品牌商标: AZ-800-C

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AZ-800-C 封闭式植物荧光成像系统
AZ-800-C Plant Fluorescence Imaging System

AZ-800系列植物荧光成像系统用于检测植物发出荧光的动态变化和空间分布Kautsky效应过程、荧光淬灭及其它瞬时荧光过程(瞬变)都可被摄取从而提供2维荧光图像测量参数F0, FM, FV, F0, FM, FV, QY(II)计算参数多达50多个,如NPQ, ΦPSII, FV/FM, FV/FM, RFd, qN, qP, PAR吸收率, 光合电子传递率PS。这些荧光参数图像可用于研究植物的光合生理、优良品种筛选及果实的成熟过程等等,还可研究因病变、衰老、环境胁迫或突变造成的荧光变化。测量样品范围广,既可是单个叶绿体或单个细胞(显微荧光成像系统),也可是小的冠层(拱形三维植物荧光成像系统)或样带区域(区域植物荧光成像系统)。此外,荧光蛋白成像系统可以成像各种荧光蛋白发射荧光过程。

特点:

AZ-800系列植物荧光成像系统采用用户自行设置的光照和测量时间,测量、记录叶绿素荧光成像。多个装有超强发光二极管板提供测量光源、持续性光化学光或强饱和脉冲(饱和光闪),以驱动光化学反应。荧光成像由高端CCD摄像机抓取,时间解析度达每秒50张,是目前世界上图象抓取速度最高的荧光成像系统,从而使植物叶绿素荧光瞬间动态变化的即时测量分析成为可能。

AZ-800-C封闭式植物荧光成像系统的核心组成部分是CCD镜头、4个发光二极管板环绕在样品室周边组成。CCD镜头每秒抓取50幅分辨率为12bit512x512像素的图象。图像与测量光闪同步记录并通过USB2.0接口传输给计算机或笔记本电脑。测量光闪、持续性光化学光由发光二极管板产生,均匀照射在直径8cm的圆形测量区域。饱含光闪(光脉冲)也由发光二极管产生。该系统用PC或笔记本电脑控制。其技术原理详见参考文献

性能指标:

1)CCD探测范围400 – 1000 nmA/D12bit, 目镜可变焦,F1.2/2.86mm

标准:CCD规格:12bit,512x512像素;图像抓取速度(时间解析度):每秒50幅;

可选1CCD规格12bit, 640x480像素;图像抓取速度(时间解析度):每秒30幅;

可选2CCD规格12bit, 1392x1040像素;图像抓取速度(时间解析度):每秒15幅;

2)数据传输:USB2.0

3)测量区域最大为13x13cm

4)光源标准配置由2个蓝色发光二极管(每个发光二极管板由49450nm LED)2个红色发光二极管板(每个发光二极管板由420630nm LED)组成,另有其它不同波长发光二极管可选,48位滤波轮,可提供波长390 nm, 450 nm, 470 nm, 505 nm, 570 nm, 605 nm, 630 nm, 735 nm等。

5)测量光闪10µs - 100µs可调;光化学光可达3000µmol/m2.s;饱含光闪(脉冲)最大可达7500µmol/m2.s

6)另有STF(Single Turnover Flash)可选,光强达80000µmol/m2.s用于研究快速荧光动力学及QA再氧化动力学

7)可根据需要测量并计算多种荧光参数达50个以上,用于Kautsky诱导效应、荧光淬灭、OJIPQA再氧化(STF)、快速荧光诱导(1µs resolution,需STF)

8)样品可以是叶片、果实、小型植物或附着于枝条、石头上的绿藻等,也可以将样品放在多达384孔或96孔的多孔板或培养皿内进行测量成像分析。仪器本身配备暗室,方便暗适应

9)可根据客户需求加接配置用于绿色荧光蛋白(GFP)成像或与ADC等光合仪配套使用

10)          该系统的软件功能:

l      设置和修改实验规程,如控制时间、实验周期、光强和摄像机操作等

l      智能分割图像,显示所选图像的荧光动力学

l      软件包中设置了常规实验模块,熟练的专业人员可使用提供的编程语言设计各种测量时间和测量序列的程序

l      对选取对象的荧光参数产生图表

l      数据可输出到Excel

产地:欧洲

参考文献:

Nedbal L., Soukupova J., Kaftan D., Whitmarsh J., Trtilek M. (2000): Kinetic imaging of chlorophyll fluorescence using modulated light. Photosynthesis Research 66, pp. 3-12.

Nedbal L. and Whitmarsh J. (2004): Chlorophyll fluorescence imaging of leaves and fruits. In: Chlorophyll Fluorescence: A Signature of Photosynthesis. Papageorgiou G.C. and Govindjee (eds), Kluwer Academic Publishers.