FL3500叶绿素荧光仪有试管式和叶夹式两种，用于测量叶绿体、类囊体及藻类悬浮液或叶片的叶绿素荧光动态。叶绿素荧光测量由发光二极管产生测量光闪、饱和光闪和持续光化学光激发，具有PAM测量和OJIP快速动态测量功能。

系统由测量单元和控制单元两部分组成，其核心部件为光学测量单元（试管式为Superhead即超级探头），主要由3组发光二极管和探测器组成，试管式包括盛放悬浮液的标准试管（容量4ml）。

FL3500荧光测量仪主要用于如下研究测量：

1.        叶绿素荧光诱导测量；

2.        PAM（脉冲调制）测量；

3.        OJIP快速荧光动力学测量

4.        Q^A－再氧化动力学；

5.        状态转换；

6.        叶绿素荧光淬灭；

7.        光化学产量（效率）；

8.        光合系统II有效天线大小；

9.        Fo’及PAR吸收值（备选红外发光二极管单元）；

10.    有试管式和叶夹式两种：试管式主要用于测量叶绿体、类囊体及藻类悬浮液，也可测量小的叶片或叶片段的叶绿素荧光动态；叶夹式用于测量植物叶片或片断的叶绿素荧光动态；

11.    试管式快速版FL3500叶绿素荧光测量仪时间分辨率达1μs，可以测量单次光饱和闪光的叶绿素荧光感应，从而在没有除草剂干扰测量结构的情况下，使光合系统II天线异质性、天线大小及联通性的评估成为可能（参见Nedbal et al., J.Photochem. Photobiol.1998；

技术指标：

·       AD转换器：试管式为500 kHz/16-bit，叶夹式及水下测量探头为1 MHz/16-bit ；

·       试管式标准版时间分辨率（采样频率）4μs，快速版为1μs；

·       控制单元：双通道通用高度精确性自动微处理器FL3500，可以与各种测量单元如标准版、快速版、高灵敏度版、叶夹式及水下测量头等配合使用（无需另行购买控制单元）；

·       测量光闪：标准为波长617nm的橙光或455nm的蓝光，光闪时间2-5μs

·       饱和光闪：标准光源为630nm的红光，光闪时间20-50μs；

·       持续光化学光：标准为630nm的红光或455nm的蓝光，最大光强2500μmol光量子每平方米每秒；

·       （备选）远红外光源：用于激发光系统I，波长735nm；

·       每组lED光源强度和时间可通关软件调控，同时光源可根据研究要求选配；

·       （试管式选配）温度控制：范围0－70°C，精确度0.1°C;

·       样品试管：底面积10x10mm，容积4ml；

·       叶夹式测量室装备有叶夹，以使测量叶片或片断接近测量单元的光学表面进行无损伤荧光测量，测量面积为直径12.7 mm（0.5英寸）的圆形区域；

·       高灵敏度藻类叶绿素荧光测量仪（见右图）测量极限达1ng Chl/L，可在皮摩尔叶绿素浓度的情况下测量研究藻类（或高等植物叶绿素悬浮液）的荧光诱导、PAM荧光测量、OJIP、状态转换、QA再氧化动力学及PHII有效天线大小等；

·       水下叶绿素荧光测量仪的测量单元（水下探头）可放入水下1米深

·       FluorWin软件：定义或创建实验方案、光源控制设置、数据输出、分析处理和图表显示。

产品种类型号：

1.     FL3500/S试管式标准版叶绿素荧光仪

2.     FL3500/F试管式快速版叶绿素荧光仪

3.     FL3500/LC叶夹式叶绿素荧光仪

4.     FL3500/HS高灵敏度藻类叶绿素荧光仪

5.     FL3500/SM水下叶绿素荧光仪（右图为其测量单元）

重要参考文献：

1.     Trtilek M. et al. (1997): J. Lumin. 72 (74): 597-599.

2.     Nedbal L., Trtilek M. and Kaftan D. (1999): J. Photochem. Photobiol. 48: 154-157.

3.     Skotnica J. et al. (2000): Photosynth. Res. 65 (1): 29-40.

4.     Mock T. and Kroon B.M.A. (2002): Phytochemistry 61, pp. 41-51.

5.     Mock T. and Valentin K. (2004): J. Phycol. 40, pp. 732-741.

6.     Koblizek M., Kaftan D. and Nedbal L. (2001): Photosynth. Res. 68: 141-152.

7.     Koblizek M. et al. (2005): FEMS Microbiology Ecology 51 (3): 353–361.

8.     Nedbal L. et al. (2005): Photosynth. Res. 84: 99-106.

9.     Hill R. and Ralph P. (2006): Photochem. Photobiol. 82 (6): 1577-1585.

10.  Shlyk-Kerner O. et al. (2006): Nature 442: 827-830.

11.  Vaczi P. and Bartak M. (2006): Biol. Plant. 50 (2): 257-264

12.  Lazar D. (2006): Functional Plant Biology 33 (1): 9-30.