人间充质干细胞成骨诱导分化培养基
货号:CP1202
产品描述:伟通生物的成骨诱导分化培养基适用于干细胞向成骨细胞诱导分化,本品包含成骨分化所有成分,能有效提高成骨细胞诱导分化效率。另外附送两种成骨细胞染色液,并有详细操作步骤。产品严格无菌,无病毒和支原体,性能稳定。
产品组份
名称 |
规格 |
保质期 |
储存条件 |
运输 |
基础培养基 |
87ml |
12个月 |
2-8℃避光保存 |
冰袋运输 |
干细胞成骨诱导分化液 |
1ml |
12个月 |
2-8℃避光保存 |
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胎牛血清 |
10ml |
60个月 |
-20℃避光保存 |
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干细胞生长添加剂 |
1ml |
12个月 |
-20℃避光保存 |
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青霉素/链霉素溶液 |
1ml |
12个月 |
-20℃避光保存 |
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von Kossa染色液 |
1ml |
12个月 |
2-8℃避光保存 |
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茜素红染色液 |
1ml |
12个月 |
2-8℃避光保存 |
作为完全的,即用型的培养基,不需要额外的添加物,各组分不单独销售。
★ 产品用于
仅供研究使用。不适用于人或动物体外诊断与治疗。
使用注意事项:
1. 在配制完全培养基前,请把胎牛血清、干细胞生长添加剂、青霉素-链霉素、干细胞成骨诱导分化液等放到2-8℃冰箱过夜解冻或37℃水浴中直到完全溶解。
2. 在使用完全培养基前,需要把培养基放到37℃恒温水浴中预热20min。
3. 请把配制好的完全培养基放在4℃冰箱避光保存,并尽量在一个月内使用完。
成骨细胞诱导的准备
P0-P4代干细胞,针对P0-P4代MSC细胞进行成骨诱导分化可以获得更好的诱导效果。
培养箱:5%CO 2,37℃,饱和湿度条件下在空气中
容器:24孔板、96孔板或者6孔板
培养条件:避光贴壁培养;确保适当的气体交换
良好的细胞状态、合适的细胞融合度有助于成骨细胞的形成。
成骨诱导操作步骤:
1. MSCs按照5×103/cm2接种于24孔培养板中,在干细胞扩增培养基37℃,5% CO2的无菌培养箱中培养24h~48h,观察MSC的生长状态,直至细胞融合度达到80%,细胞存活率90%以上。吸去培养基,
2. 更换为成骨诱导培养基,每3天更换一次培养基,连续诱导至3~4周。
3. 在经过特定时期的培养后,成骨培养后的细胞至4周时(26-28天)可以被von Kossa染色液染色骨结节鉴定晚期成骨或茜素红S染色(诱导超过21天后,见下面的方法)处理分析,以及可以进行基因表达分析和蛋白检测等。
★Von Kossa’s矿化结节染色法
原理是将矿化基质中的磷酸盐(钙)、碳酸盐(钙)转变为磷酸银、碳酸银,然后用日光、紫外线或强还原剂使其还原为黑色的金属银。本试验染色过程中未作细胞衬染。
1. 培养皿用PBS冲洗2次,4%多聚甲醛固定5分钟,双蒸水冲洗3次。
2. 培养皿中加入5%**银溶液1ml,在黑暗中孵育10分钟,将培养板开盖在紫外灯下照射1小时。
3. 倒出残留的**银溶液,蒸馏水冲洗3遍。
4. 培养皿中加入5%硫代硫酸钠溶液1ml,中和残留的**银溶液,吸出残液。
5. 室温下晾干,封固。
★ 茜素红S染色分析
1. 经过21天或者更长时间的成骨分化培养后,去除培养基,用PBS清洗一次,然后再用4%的甲醛溶液固定细胞30 min,
2. 用PBS清洗2次,再用2%、pH4.2的茜素红S染色2~3min后,用PBS清洗3次,去处残留的染色液,
3. 在光学显微镜下进行显色观察分析。
质量控制
每个批号的诱导分化培养基均将干细胞有效诱导为成骨细胞。产品的整个生产流程均在GMP车间完成,严格按照GMP标准操作。每批产品均有严格的细菌、真菌、内毒素、pH等指标检测。确保产品质量合格。
检测指标 |
检测结果 |
参照说明 |
细菌 |
阴性 |
阴性 |
真菌 |
阴性 |
阴性 |
支原体 |
阴性 |
阴性 |
细胞分化效果 |
符合标准 |
参照检测标准 |
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